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(一)、普通光学显微镜" R- p5 X/ o9 x4 x2 D4 l& C. x1 u
普通生物显微镜由3部分构成,即:
l. ?1 b3 K: E①照明系统,包括光源和聚光器;! { j4 \1 w* C; a0 r; f
②光学放大系统,由物镜和目镜组成,是显微镜的主体,为了消除球差和色差,目镜和物镜都由复杂的透镜组构成;
: ?: `9 j K/ w( |. a; s! y③机械装置,用于固定材料和观察方便(图2-1)。$ k/ C+ Q% W0 w6 i$ V
; ?3 U- \! _- R; v
图2-1 尼康E-600显微镜
7 X. q5 f4 c+ R$ u2 c9 O显微镜物象是否清楚不仅决定于放大倍数,还与显微镜的分辨力(resolution)有关,分辨力是指显微镜(或人的眼睛距目标25cm处)能分辨物体最小间隔的能力,分辨力的大小决定于光的波长和镜口率以及介质的折射率,用公式表示为:
8 }# o! N8 L8 v8 ]$ MR=0.61λ /N.A. N.A.=nsinα/28 O8 s$ B# M) _& r# M8 C& V
式中:n=介质折射率;α=镜口角(标本对物镜镜口的张角),N.A.=镜口率(numeric aperture)。镜口角总是要小于180冢??詓ina/2的最大值必然小于1。
8 d. O! p: L# R$ C/ `$ X& H( X/ ~, G表2-1 及中介质的折射率
' r6 z7 L/ L1 P5 n) n. U& Q0 U介质
) n* ^9 y T2 z2 o7 V6 n4 t1 u空气
9 p4 I2 i9 O) M! b# ?: s: F' p! S水
0 z; O, B; x( q& U香柏油( J+ _( w6 a$ }; C6 u/ L1 k
α溴萘* l d" y5 _! I% B1 H; b) }
折射率4 s! h3 g4 r* A$ w4 n/ S7 Y
19 c4 B z" ]+ d& ?# s) P/ w4 D' ]
1.33+ m* H0 R) B. z: N; }' u% E
1.5157 f% X1 e$ h# }" i1 |' s/ V+ J
1.66
% Q# a" z" h9 K2 a制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。 T% `1 E$ O C8 Q5 p, f9 I
对于干燥物镜来说,介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。' c+ v. z8 _4 }1 v
普通光线的波长为400~700nm,因此显微镜分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力是0.2mm,所以一般显微镜设计的最大放大倍数通常为1000X。
6 t4 }3 X, h8 A) c. _" z/ U" I(二)、荧光显微镜. Q5 v6 q5 l% @0 w" B- k% T
# f! K5 R" l1 V- h+ N$ g, a5 }图2-2 尼康E800荧光DIC显微镜+ W7 k5 k! X( l% [: k7 W$ F
细胞中有些物质,如叶绿素等,受紫外线照射后可发荧光;另有一些物质本身虽不能发荧光,但如果用荧光染料或荧光抗体染色后,经紫外线照射亦可发荧光,荧光显微镜(图2-2,3,4)就是对这类物质进行定性和定量研究的工具之一。# |+ {2 I3 t4 |5 `3 r, v1 ~
+ b/ z/ I1 T* {6 L: N图2-3 落射式照明原理; `1 G3 [2 w1 u& s7 F4 c- N! p
荧光显微镜和普通显微镜有以下的区别:/ f8 E7 x0 }7 R8 m) O* k
1.照明方式通常为落射式,即光源通过物镜投射于样品上(图2-3);
" ^* P& @ B# o8 r% L2.光源为紫外光,波长较短,分辨力高于普通显微镜;1 R9 D: m5 ~: I% q( b
3. 有两个特殊的滤光片,光源前的用以滤除可见光,目镜和物镜之间的用于滤除紫外线,用以保护人目。- U) a" q6 }! G7 w5 |9 |
% f9 \6 ]" f z1 H8 V- B图2-4 荧光显微镜照片(微管呈绿色、微丝红色、核蓝色),图片来自http://www.itg.uiuc.edu
# {* @# h) p* P$ v(三)、激光共聚焦扫描显微境
, l$ ^7 J" V) @) s. C) U& J/ u {. N. _% U q7 D% k
图2-5 激光共聚焦扫描显微镜
9 i5 s T( F7 ~$ p; A( D+ ?( n$ k1 K* A- ]! w0 U2 S# b+ M/ U! l
图2-6 LCSM照片,蓝色为细胞核,绿色为微管,图片来自http://www.itg.uiuc.edu
' r5 @9 J, o* j' f/ ?3 \- q8 c激光共聚焦扫描显微镜(laser confocal scanning microscope,图2-5、6)用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。由于激光束的波长较短,光束很细,所以共焦激光扫描显微镜有较高的分辨力,大约是普通光学显微镜的3倍。
6 t5 u+ P2 C2 {0 Z# b' g9 c) w系统经一次调焦,扫描限制在样品的一个平面内。调焦深度不一样时,就可以获得样品不同深度层次的图像,这些图像信息都储于计算机内,通过计算机分析和模拟,就能显示细胞样品的立体结构。
I1 j' v) u! k2 u激光共聚焦扫描显微镜既可以用于观察细胞形态,也可以用于细胞内生化成分的定量分析、光密度统计以及细胞形态的测量。9 o. a# ]4 l& R$ k1 v9 _% `
(四)、暗视野显微镜
7 q5 T' O+ R) i2 T8 \暗视野显微镜(dark field microscope,图2-7)的聚光镜中央有当光片,使照明光线不直接进人物镜,只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜,因而视野的背景是黑的,物体的边缘是亮的。利用这种显微镜能见到小至 4~200nm的微粒子,分辨率可比普通显微镜高50倍。
% W$ b& S& p/ C; t8 ?2 u+ `$ j: v# V* Q4 v D9 h8 Z+ m
图2-7 暗视野照明方式
+ }5 ^+ G6 R$ s+ N+ Y(五)、相差显微镜" n# @, ?* O E- J
相差显微镜(phasecontrast microscope,图2-8、9)由P.Zernike于1932年发明,并因此获1953年诺贝尔物理奖。这种显微镜最大的特点是可以观察未经染色的标本和活细胞。
" Q/ v: B9 g7 r3 h& r0 ~2 e相差显微镜的基本原理是,把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。光线透过标本后发生折射,偏离了原来的光路,同时被延迟了1/4λ(波长),如果再增加或减少1/4λ,则光程差变为1/2λ,两束光合轴后干涉加强,振幅增大或减下,提高反差。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处:
0 B' p% G+ _: f. A/ B1 Z1. 环形光阑(annular diaphragm) 位于光源与聚光器之间,作用是使透过聚光器的光线形成空心光锥,焦聚到标本上。, H" W# {& P4 w8 F! Q" n& M
2.相位板(annular phaseplate)在物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍射光的相位推迟1/4λ。分为两种:1 c+ t( r+ r! h/ D4 ~" b$ ]
1. A+相板:将直射光推迟1/4λ,两组光波合轴后光波相加,振幅加大,标本结构比周围介质更加变亮,形成亮反差(或称负反差)。& d: f& O- K, \- M A
2. B+相板:将衍射光推迟1/4λ,两组光线合轴后光波相减,振幅变小,形成暗反差(或称正反差),结构比周围介质更加变暗。
7 `; V: O& W2 x; i: }
4 ? m$ R3 H2 e图2-8 相差显微镜照明原理, e+ d8 J5 r/ _7 ^7 [! h/ W* E
' _0 ~' h3 v ~, |/ E+ D8 `6 O
图2-9 一种介壳虫的染色体(PCM照片)4 T7 y. b$ M$ y
(六)、偏光显微镜; L. d/ x' F% y
偏光显微镜(polarizing microscope)用于检测具有双折射性的物质,如纤维丝、纺锤体、胶原、染色体等等。和普通显微镜不同的是:其光源前有偏振片(起偏器),使进入显微镜的光线为偏振光,镜筒中有检偏器(一个偏振方向与起偏器垂直的的起偏器),这种显微镜的载物台是可以旋转的,当载物台上放入单折射的物质时,无论如何旋转载物台,由于两个偏振片是垂直的,显微镜里看不到光线,而放入双折射性物质时,由于光线通过这类物质时发生偏转,因此旋转载物台便能检测到这种物体。7 Y$ w7 K7 v1 Y4 e3 L0 d
(七)、微分干涉差显微镜
& O# v8 h9 Q0 m; Q$ o1952年,Nomarski在相差显微镜原理的基础上发明了微分干涉差显微镜(differential interference contrast microscope)。DIC显微镜又称Nomarski相差显微镜(Nomarki contrast microscope),其优点是能显示结构的三维立体投影影像。与相差显微镜相比,其标本可略厚一点,折射率差别更大,故影像的立体感更强。 G* s, T/ o! r+ p9 B
DIC显微镜的物理原理完全不同于相差显微镜,技术设计要复杂得多。DIC利用的是偏振光,有四个特殊的光学组件:偏振器(polarizer)、DIC棱镜、DIC滑行器和检偏器(analyzer)。偏振器直接装在聚光系统的前面,使光线发生线性偏振。在聚光器中则安装了石英Wollaston棱镜,即DIC棱镜,此棱镜可将一束光分解成偏振方向不同的两束光(x和y),二者成一小夹角。聚光器将两束光调整成与显微镜光轴平行的方向。最初两束光相位一致,在穿过标本相邻的区域后,由于标本的厚度和折射率不同,引起了两束光发生了光程差。在物镜的后焦面处安装了第二个Wollaston棱镜,即DIC滑行器,它把两束光波合并成一束。这时两束光的偏振面(x和y)仍然存在。最后光束穿过第二个偏振装置,即检偏器。在光束形成目镜DIC影像之前,检偏器与偏光器的方向成直角。检偏器将两束垂直的光波组合成具有相同偏振面的两束光,从而使二者发生干涉。x和y波的光程差决定着透光的多少。光程差值为0时,没有光穿过检偏器;光程差值等于波长一半时,穿过的光达到最大值。于是在灰色的背景上,标本结构呈现出亮暗差。为了使影像的反差达到最佳状态,可通过调节DIC滑行器的纵行微调来改变光程差,光程差可改变影像的亮度。调节DIC滑行器可使标本的细微结构呈现出正或负的投影形象,通常是一侧亮,而另一侧暗,这便造成了标本的人为三维立体感,类似大理石上的浮雕(图2-10)。7 i& P6 Q) R1 @& h% t/ g5 K
9 Y6 S9 i" Z6 t' A0 c& B图2-10 DIC显微镜下的硅藻(伪彩色)
5 `! w6 Z) i! b/ o; l(八)、倒置显微镜/ ?( b, L1 s) P' T/ Y. }
组成和普通显微镜一样,只不过物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上(图2-11),用于观察培养的活细胞,具有相差物镜。7 T9 j* t, ^- m
进入20世纪80年代以来,光学显微镜的设计和制作又有了很大的发展,其发展趋势主要表现在,注重实用性和多功能方面的改进。在装配设计上趋于采用组合方式,集普通光镜加相差、荧光、暗视野、DIC、摄影装置于一体,从而操作灵活,使用方便。+ B3 _) k+ ^) A+ `7 Z3 _
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图2-11 莱卡倒置显微镜/ J) ?" r( A- J, @1 i- @
显微镜使细胞的结构,特别是一些较大的细胞器,如核、线粒体等,立体感特别强,适合于显微操作。目前像基因注入、核移植、转基因等的显微操作常在这种显微镜下进行。 |
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