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(一)、普通光学显微镜7 m* N r8 ?& C" q( Z( G
普通生物显微镜由3部分构成,即:$ J9 ?1 ~, L8 A% C
①照明系统,包括光源和聚光器;* M# \( W4 n3 }( s( K' {
②光学放大系统,由物镜和目镜组成,是显微镜的主体,为了消除球差和色差,目镜和物镜都由复杂的透镜组构成;
0 Z5 r6 }/ A, l( S5 e③机械装置,用于固定材料和观察方便(图2-1)。
( i6 s# l0 D9 F8 |# ]+ Z, k* s- I; H, j3 a, `! @/ }6 u
图2-1 尼康E-600显微镜
! o) S7 Z8 K( z3 A5 d4 w显微镜物象是否清楚不仅决定于放大倍数,还与显微镜的分辨力(resolution)有关,分辨力是指显微镜(或人的眼睛距目标25cm处)能分辨物体最小间隔的能力,分辨力的大小决定于光的波长和镜口率以及介质的折射率,用公式表示为:4 N x* f) O3 r% y I& y
R=0.61λ /N.A. N.A.=nsinα/22 u& c9 V3 J6 N2 m! m9 \$ w ?, F* m( k
式中:n=介质折射率;α=镜口角(标本对物镜镜口的张角),N.A.=镜口率(numeric aperture)。镜口角总是要小于180冢??詓ina/2的最大值必然小于1。7 K* a# t, z! _, ^
表2-1 及中介质的折射率
1 F; a' k/ s }* }& D# K0 P" y! A介质) p: b0 q. t. ?
空气& {6 l- p. h* ^. m0 E
水
) `' D/ y( e7 W; ]香柏油+ N3 O' @( C! s [: r, p
α溴萘
. d$ M P' o/ m+ p, D, A- j% I折射率( |" o" I) V& Q: w
1
3 p* @2 U* V: ~, c1.33
. E! V' ], G8 j+ b5 E4 W. j% }1.515
* k, T' h" `- }; Y6 A4 l. }+ d! k1.66" [6 Q6 {8 M' K& ^8 J: z% }% F' i
制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。5 B7 Q8 [4 J6 Z+ ?
对于干燥物镜来说,介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。+ k: n6 |. Y0 N; K8 y& ^& d
普通光线的波长为400~700nm,因此显微镜分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力是0.2mm,所以一般显微镜设计的最大放大倍数通常为1000X。
+ |" d; P+ c3 {3 a% r$ P0 p O V$ p(二)、荧光显微镜/ e" E# h* L5 y* | O" s7 I5 H
p/ }, r3 `5 T) t7 q( I( o
图2-2 尼康E800荧光DIC显微镜 K; g! I1 S0 ?% Q4 c; `
细胞中有些物质,如叶绿素等,受紫外线照射后可发荧光;另有一些物质本身虽不能发荧光,但如果用荧光染料或荧光抗体染色后,经紫外线照射亦可发荧光,荧光显微镜(图2-2,3,4)就是对这类物质进行定性和定量研究的工具之一。
8 n i- S! a: E8 m: z) s% B5 M( q8 N0 z; y- m
图2-3 落射式照明原理
, @& {4 N+ [3 V2 \6 [4 L, P& F# M荧光显微镜和普通显微镜有以下的区别:* V9 Z0 U! D9 w7 f0 F$ ^; F$ P6 H. j
1.照明方式通常为落射式,即光源通过物镜投射于样品上(图2-3);
# L$ {5 W! J) a b+ P8 t6 f2.光源为紫外光,波长较短,分辨力高于普通显微镜;
$ v1 I' L2 ]! y- X3. 有两个特殊的滤光片,光源前的用以滤除可见光,目镜和物镜之间的用于滤除紫外线,用以保护人目。9 a' n6 q8 Z k) K# e& |7 u# d
e' F/ {) V' n6 ? C4 l$ T2 ^( h
图2-4 荧光显微镜照片(微管呈绿色、微丝红色、核蓝色),图片来自http://www.itg.uiuc.edu7 e1 i9 a3 ?; b
(三)、激光共聚焦扫描显微境
2 C0 z$ f$ }; C a! c0 j
1 {. J" \' o, J( s) N! l$ I图2-5 激光共聚焦扫描显微镜
' x$ J" K& ^5 w, Y; C8 f. {/ w) [5 ^4 L" f; Y2 M
图2-6 LCSM照片,蓝色为细胞核,绿色为微管,图片来自http://www.itg.uiuc.edu- S1 ?" u* A, Q1 R' A) F4 f3 n) ?# G
激光共聚焦扫描显微镜(laser confocal scanning microscope,图2-5、6)用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。由于激光束的波长较短,光束很细,所以共焦激光扫描显微镜有较高的分辨力,大约是普通光学显微镜的3倍。
/ j9 x" ?: M) e0 X8 X: c5 T系统经一次调焦,扫描限制在样品的一个平面内。调焦深度不一样时,就可以获得样品不同深度层次的图像,这些图像信息都储于计算机内,通过计算机分析和模拟,就能显示细胞样品的立体结构。
* S/ J) m, B) _) x, F4 Z. i, `激光共聚焦扫描显微镜既可以用于观察细胞形态,也可以用于细胞内生化成分的定量分析、光密度统计以及细胞形态的测量。; y# f3 l, _: l
(四)、暗视野显微镜6 K9 {) \ y! e# \
暗视野显微镜(dark field microscope,图2-7)的聚光镜中央有当光片,使照明光线不直接进人物镜,只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜,因而视野的背景是黑的,物体的边缘是亮的。利用这种显微镜能见到小至 4~200nm的微粒子,分辨率可比普通显微镜高50倍。
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4 r; s# P; n! l2 ~: h8 I4 s f+ `图2-7 暗视野照明方式8 A( R& K: z/ u' N7 _7 m& g
(五)、相差显微镜
) B7 S# p) b9 A$ y" o6 J2 K- \+ O# j相差显微镜(phasecontrast microscope,图2-8、9)由P.Zernike于1932年发明,并因此获1953年诺贝尔物理奖。这种显微镜最大的特点是可以观察未经染色的标本和活细胞。
9 u6 o# s- S3 { b' y% C相差显微镜的基本原理是,把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。光线透过标本后发生折射,偏离了原来的光路,同时被延迟了1/4λ(波长),如果再增加或减少1/4λ,则光程差变为1/2λ,两束光合轴后干涉加强,振幅增大或减下,提高反差。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处:3 X$ B' h$ r2 R, L
1. 环形光阑(annular diaphragm) 位于光源与聚光器之间,作用是使透过聚光器的光线形成空心光锥,焦聚到标本上。) H5 z1 s" [) o9 s% V$ t1 T
2.相位板(annular phaseplate)在物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍射光的相位推迟1/4λ。分为两种:
& P$ S2 f" d1 N( o% p r/ L) r1. A+相板:将直射光推迟1/4λ,两组光波合轴后光波相加,振幅加大,标本结构比周围介质更加变亮,形成亮反差(或称负反差)。0 k5 ~( b3 l5 N* k: _* T
2. B+相板:将衍射光推迟1/4λ,两组光线合轴后光波相减,振幅变小,形成暗反差(或称正反差),结构比周围介质更加变暗。$ k7 w) ]9 p$ W& j3 i/ e: k
6 e- u2 `4 y, P7 b/ D; m图2-8 相差显微镜照明原理
8 r1 {* s, q$ A0 K/ O+ f$ X3 l3 P
" e( b4 b" H6 i- Z- s图2-9 一种介壳虫的染色体(PCM照片)
1 B+ P1 A4 w0 Q(六)、偏光显微镜) B0 p$ l7 S, V4 ], k; ?1 u8 z, `) g
偏光显微镜(polarizing microscope)用于检测具有双折射性的物质,如纤维丝、纺锤体、胶原、染色体等等。和普通显微镜不同的是:其光源前有偏振片(起偏器),使进入显微镜的光线为偏振光,镜筒中有检偏器(一个偏振方向与起偏器垂直的的起偏器),这种显微镜的载物台是可以旋转的,当载物台上放入单折射的物质时,无论如何旋转载物台,由于两个偏振片是垂直的,显微镜里看不到光线,而放入双折射性物质时,由于光线通过这类物质时发生偏转,因此旋转载物台便能检测到这种物体。
, e f. N! _! s. S& l+ ]# w. l# D(七)、微分干涉差显微镜
! W2 E' o/ I8 `6 a& U1952年,Nomarski在相差显微镜原理的基础上发明了微分干涉差显微镜(differential interference contrast microscope)。DIC显微镜又称Nomarski相差显微镜(Nomarki contrast microscope),其优点是能显示结构的三维立体投影影像。与相差显微镜相比,其标本可略厚一点,折射率差别更大,故影像的立体感更强。
1 F# t4 r: y0 T* y. I, bDIC显微镜的物理原理完全不同于相差显微镜,技术设计要复杂得多。DIC利用的是偏振光,有四个特殊的光学组件:偏振器(polarizer)、DIC棱镜、DIC滑行器和检偏器(analyzer)。偏振器直接装在聚光系统的前面,使光线发生线性偏振。在聚光器中则安装了石英Wollaston棱镜,即DIC棱镜,此棱镜可将一束光分解成偏振方向不同的两束光(x和y),二者成一小夹角。聚光器将两束光调整成与显微镜光轴平行的方向。最初两束光相位一致,在穿过标本相邻的区域后,由于标本的厚度和折射率不同,引起了两束光发生了光程差。在物镜的后焦面处安装了第二个Wollaston棱镜,即DIC滑行器,它把两束光波合并成一束。这时两束光的偏振面(x和y)仍然存在。最后光束穿过第二个偏振装置,即检偏器。在光束形成目镜DIC影像之前,检偏器与偏光器的方向成直角。检偏器将两束垂直的光波组合成具有相同偏振面的两束光,从而使二者发生干涉。x和y波的光程差决定着透光的多少。光程差值为0时,没有光穿过检偏器;光程差值等于波长一半时,穿过的光达到最大值。于是在灰色的背景上,标本结构呈现出亮暗差。为了使影像的反差达到最佳状态,可通过调节DIC滑行器的纵行微调来改变光程差,光程差可改变影像的亮度。调节DIC滑行器可使标本的细微结构呈现出正或负的投影形象,通常是一侧亮,而另一侧暗,这便造成了标本的人为三维立体感,类似大理石上的浮雕(图2-10)。- O6 e% Y( M" A, W) }7 H( h k$ ~) m' b
* Y, u0 d! G/ u A: K图2-10 DIC显微镜下的硅藻(伪彩色)
! H- Q4 S/ E! L( f8 _ B% [$ @4 D(八)、倒置显微镜
, ?& J+ j7 q& r( y* A) u组成和普通显微镜一样,只不过物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上(图2-11),用于观察培养的活细胞,具有相差物镜。: P. L2 f( t. z: W; T' c
进入20世纪80年代以来,光学显微镜的设计和制作又有了很大的发展,其发展趋势主要表现在,注重实用性和多功能方面的改进。在装配设计上趋于采用组合方式,集普通光镜加相差、荧光、暗视野、DIC、摄影装置于一体,从而操作灵活,使用方便。
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图2-11 莱卡倒置显微镜
/ @. v9 j- o3 p+ q显微镜使细胞的结构,特别是一些较大的细胞器,如核、线粒体等,立体感特别强,适合于显微操作。目前像基因注入、核移植、转基因等的显微操作常在这种显微镜下进行。 |
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