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(一)、普通光学显微镜4 W5 w( N# {0 `8 i# m* d' Q
普通生物显微镜由3部分构成,即:. B& {1 u' P% s& \7 t
①照明系统,包括光源和聚光器;
" {, V2 d( x- o3 |. a' x# W7 Q②光学放大系统,由物镜和目镜组成,是显微镜的主体,为了消除球差和色差,目镜和物镜都由复杂的透镜组构成;' C, N+ \ |* g& W! S
③机械装置,用于固定材料和观察方便(图2-1)。( i u h& g/ r+ X( u
+ ]0 ^7 k0 E; }! l4 Y$ T$ ?( A图2-1 尼康E-600显微镜& ?; G8 T( S9 L# H5 U2 i
显微镜物象是否清楚不仅决定于放大倍数,还与显微镜的分辨力(resolution)有关,分辨力是指显微镜(或人的眼睛距目标25cm处)能分辨物体最小间隔的能力,分辨力的大小决定于光的波长和镜口率以及介质的折射率,用公式表示为:* ~4 B4 `3 a% j7 y( c$ `( S
R=0.61λ /N.A. N.A.=nsinα/2 x7 h5 F) j* L8 U" X( \5 N C) l* D
式中:n=介质折射率;α=镜口角(标本对物镜镜口的张角),N.A.=镜口率(numeric aperture)。镜口角总是要小于180冢??詓ina/2的最大值必然小于1。
. L& s3 G$ _; M Y8 W表2-1 及中介质的折射率
7 ^$ Y$ a7 e0 L) a$ ]2 Z) L2 T介质- `, U% u6 r; v: s7 L( y
空气
7 H" f$ ]% p& ?" C6 ?" [4 A水8 d; a" s C3 K4 Q" }7 w0 i
香柏油" u* \2 G/ B& {
α溴萘* v' b- }4 E' }2 p
折射率
9 h0 q {5 p) F. V& w8 H1
! f0 o+ x; B' F* ]1.33, _ a# e1 j/ [# z5 b3 x
1.515& c: P7 n& }; t. n
1.66/ I" X" x9 q" G: l7 v* Y
制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。
4 `1 ?4 S% [4 D( x. } G6 T6 q, v对于干燥物镜来说,介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。
5 V/ w5 }- Y( n& x9 L9 C$ P( ^普通光线的波长为400~700nm,因此显微镜分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力是0.2mm,所以一般显微镜设计的最大放大倍数通常为1000X。
2 @! e+ |, W4 b a' K$ x$ W+ b(二)、荧光显微镜
5 c R5 k f3 P P; a9 k
4 K2 z) Q6 N8 A" R6 u/ X) n& S图2-2 尼康E800荧光DIC显微镜
, }- U. k4 F# |! ^& {5 ^细胞中有些物质,如叶绿素等,受紫外线照射后可发荧光;另有一些物质本身虽不能发荧光,但如果用荧光染料或荧光抗体染色后,经紫外线照射亦可发荧光,荧光显微镜(图2-2,3,4)就是对这类物质进行定性和定量研究的工具之一。
$ y- m( p+ S6 ~6 }8 U0 f( r: C: N# D3 f! K3 O- i( z
图2-3 落射式照明原理
) c, H, q6 j$ g ~荧光显微镜和普通显微镜有以下的区别:
7 k/ ?$ N. x, ~1.照明方式通常为落射式,即光源通过物镜投射于样品上(图2-3);/ } V: Z# d, }. F4 E- J. V* S
2.光源为紫外光,波长较短,分辨力高于普通显微镜;# `' b, ]: j. z2 N/ _* D
3. 有两个特殊的滤光片,光源前的用以滤除可见光,目镜和物镜之间的用于滤除紫外线,用以保护人目。
7 Z! j7 q4 V. \7 d4 p
6 M+ f% o9 C* A% K4 @& ^ X图2-4 荧光显微镜照片(微管呈绿色、微丝红色、核蓝色),图片来自http://www.itg.uiuc.edu6 _( w6 {) r) v! h2 K
(三)、激光共聚焦扫描显微境
% ]4 X( l- U* k/ y& @ P) ^
9 D, _# h# l. i* M+ U; N0 c图2-5 激光共聚焦扫描显微镜& z& m- f4 t% G0 ^/ R2 B$ e
3 u, ^5 ^4 G! I& G
图2-6 LCSM照片,蓝色为细胞核,绿色为微管,图片来自http://www.itg.uiuc.edu G* m+ u, P1 |) Y
激光共聚焦扫描显微镜(laser confocal scanning microscope,图2-5、6)用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。由于激光束的波长较短,光束很细,所以共焦激光扫描显微镜有较高的分辨力,大约是普通光学显微镜的3倍。
" Z6 j7 }* D. {& c$ \/ B, d3 p系统经一次调焦,扫描限制在样品的一个平面内。调焦深度不一样时,就可以获得样品不同深度层次的图像,这些图像信息都储于计算机内,通过计算机分析和模拟,就能显示细胞样品的立体结构。
) L5 E6 X, \, k R5 @' N激光共聚焦扫描显微镜既可以用于观察细胞形态,也可以用于细胞内生化成分的定量分析、光密度统计以及细胞形态的测量。
. R2 O& T' r0 B6 w(四)、暗视野显微镜
) M3 p6 q# p. e6 n9 J. v* Y& C暗视野显微镜(dark field microscope,图2-7)的聚光镜中央有当光片,使照明光线不直接进人物镜,只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜,因而视野的背景是黑的,物体的边缘是亮的。利用这种显微镜能见到小至 4~200nm的微粒子,分辨率可比普通显微镜高50倍。4 z! m$ }9 C) p* V
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图2-7 暗视野照明方式
1 O2 C, Z5 ?4 W! W- v(五)、相差显微镜7 J5 X% Y" [! g- h6 W6 V8 u
相差显微镜(phasecontrast microscope,图2-8、9)由P.Zernike于1932年发明,并因此获1953年诺贝尔物理奖。这种显微镜最大的特点是可以观察未经染色的标本和活细胞。3 K; r s5 t6 T
相差显微镜的基本原理是,把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。光线透过标本后发生折射,偏离了原来的光路,同时被延迟了1/4λ(波长),如果再增加或减少1/4λ,则光程差变为1/2λ,两束光合轴后干涉加强,振幅增大或减下,提高反差。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处:1 S' u. u+ t4 l! U! J
1. 环形光阑(annular diaphragm) 位于光源与聚光器之间,作用是使透过聚光器的光线形成空心光锥,焦聚到标本上。
% z: X- ^% s# v! ]8 m2.相位板(annular phaseplate)在物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍射光的相位推迟1/4λ。分为两种:) q6 n: W2 j$ u+ {
1. A+相板:将直射光推迟1/4λ,两组光波合轴后光波相加,振幅加大,标本结构比周围介质更加变亮,形成亮反差(或称负反差)。! |* [5 A, K5 s7 ? K' z+ [+ k
2. B+相板:将衍射光推迟1/4λ,两组光线合轴后光波相减,振幅变小,形成暗反差(或称正反差),结构比周围介质更加变暗。! N1 k6 a) a5 K0 G* p4 ]
t5 x, w1 {0 B3 N/ i图2-8 相差显微镜照明原理( H8 k6 @6 o q% I! X
% _# f( A( |7 i$ a' A1 b; ]图2-9 一种介壳虫的染色体(PCM照片)
' |+ t$ ~: k% k6 [* U+ p( u(六)、偏光显微镜 a4 s7 W; O4 @) t: u
偏光显微镜(polarizing microscope)用于检测具有双折射性的物质,如纤维丝、纺锤体、胶原、染色体等等。和普通显微镜不同的是:其光源前有偏振片(起偏器),使进入显微镜的光线为偏振光,镜筒中有检偏器(一个偏振方向与起偏器垂直的的起偏器),这种显微镜的载物台是可以旋转的,当载物台上放入单折射的物质时,无论如何旋转载物台,由于两个偏振片是垂直的,显微镜里看不到光线,而放入双折射性物质时,由于光线通过这类物质时发生偏转,因此旋转载物台便能检测到这种物体。: A8 V( r: j8 ^: S9 e' ]6 S7 b$ Y
(七)、微分干涉差显微镜& D3 W Y2 e1 ?/ a% V# \+ v
1952年,Nomarski在相差显微镜原理的基础上发明了微分干涉差显微镜(differential interference contrast microscope)。DIC显微镜又称Nomarski相差显微镜(Nomarki contrast microscope),其优点是能显示结构的三维立体投影影像。与相差显微镜相比,其标本可略厚一点,折射率差别更大,故影像的立体感更强。
% F: Z* d+ k& V% n2 C- NDIC显微镜的物理原理完全不同于相差显微镜,技术设计要复杂得多。DIC利用的是偏振光,有四个特殊的光学组件:偏振器(polarizer)、DIC棱镜、DIC滑行器和检偏器(analyzer)。偏振器直接装在聚光系统的前面,使光线发生线性偏振。在聚光器中则安装了石英Wollaston棱镜,即DIC棱镜,此棱镜可将一束光分解成偏振方向不同的两束光(x和y),二者成一小夹角。聚光器将两束光调整成与显微镜光轴平行的方向。最初两束光相位一致,在穿过标本相邻的区域后,由于标本的厚度和折射率不同,引起了两束光发生了光程差。在物镜的后焦面处安装了第二个Wollaston棱镜,即DIC滑行器,它把两束光波合并成一束。这时两束光的偏振面(x和y)仍然存在。最后光束穿过第二个偏振装置,即检偏器。在光束形成目镜DIC影像之前,检偏器与偏光器的方向成直角。检偏器将两束垂直的光波组合成具有相同偏振面的两束光,从而使二者发生干涉。x和y波的光程差决定着透光的多少。光程差值为0时,没有光穿过检偏器;光程差值等于波长一半时,穿过的光达到最大值。于是在灰色的背景上,标本结构呈现出亮暗差。为了使影像的反差达到最佳状态,可通过调节DIC滑行器的纵行微调来改变光程差,光程差可改变影像的亮度。调节DIC滑行器可使标本的细微结构呈现出正或负的投影形象,通常是一侧亮,而另一侧暗,这便造成了标本的人为三维立体感,类似大理石上的浮雕(图2-10)。/ @; f; T/ u1 [0 d. Z& k5 \
& M2 I/ E. ` v5 `% K4 @2 q图2-10 DIC显微镜下的硅藻(伪彩色)7 y* \- j I3 n- S7 i, S1 e2 y
(八)、倒置显微镜
* U2 o/ d. y2 s( K0 @% q4 \组成和普通显微镜一样,只不过物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上(图2-11),用于观察培养的活细胞,具有相差物镜。1 R" S: j8 f/ G1 a* Y; M1 J
进入20世纪80年代以来,光学显微镜的设计和制作又有了很大的发展,其发展趋势主要表现在,注重实用性和多功能方面的改进。在装配设计上趋于采用组合方式,集普通光镜加相差、荧光、暗视野、DIC、摄影装置于一体,从而操作灵活,使用方便。
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2 P+ z2 p" w7 M- Y( u. r$ T6 ?9 _图2-11 莱卡倒置显微镜
- N" Q, d3 x( ^. C% \* |) m' _显微镜使细胞的结构,特别是一些较大的细胞器,如核、线粒体等,立体感特别强,适合于显微操作。目前像基因注入、核移植、转基因等的显微操作常在这种显微镜下进行。 |
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